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基础信息Product information
产品名称:

兔腮腺细胞

产品简介:

兔腮腺细胞公司正在出售的产品:小鼠输尿管上皮细胞 兔角膜上皮细胞 锌结合乙醇脱氢酶结构域蛋白2抗体 荧光素酶标记的人肾细胞腺癌细胞;ACHN-Luc GalNAc-T7蛋白抗体 BJ人皮肤成纤维细胞 FGD6蛋白抗体 C8-D1A (小鼠小脑组织细胞)

产品型号:

厂商性质:经销商

访问量:658

更新时间:2024-11-05

产品特性Product characteristics

本网站销售的化学产品仅供科学研究或工业应用,不直接用于食品、药品、临床或动物的诊断或治疗!

产品名称:兔腮腺细胞

组织来源:腮腺

产品规格:5×105cells/T25细胞培养瓶

培养信息:

兔腮腺细胞

培养基:含FBS、生长添加剂、PenicillinStreptomycin

换液频率:每2-3天换液一次

生长特性:贴壁

细胞形态:梭形、多角形

传代特性:可传1-2

消化液:0.25%

培养条件:气相:空气,95%CO25%

兔腮腺体外培养周期有限;建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养,以此保证该细胞的佳培养状态。

细胞简介:

兔腮腺细胞

兔腮腺分离自腮腺组织;腮腺是哺乳类动物口腔中位于下颌角处的大唾液腺,位于外耳道的前下方,下颌后窝内及下颌支的深面。腮腺也是某些无尾目动物颈部有毒皮肤腺的聚集体;唾液腺有3对,腮腺、舌下腺和颌下腺,其中大的一对是腮腺。腮腺细胞是高度分化的上皮源性细胞,是一种营养需要复杂、在一般合成培养基中不易生长,体外培养比较困难。目前,DMEM培养液被认为较适于腺细胞的培养。加入一定量的血清更有利于细胞的生长、增殖与分化。另外,接种的细胞密度也是培养成功的关键因素之一,尤其是在腺细胞这种单层细胞培养时,接种的细胞总数量和生长基质表面的细胞密度对整个细胞的生长均有影响。

方法简介:

实验室分离的兔腮腺采用胶原酶-联合消化后差速贴壁,结合上皮细胞专用培养基培养筛选制备而来,总量约为5×10cells/瓶。

质量检测:

实验室分离的兔腮腺经PCK免疫荧光鉴定,纯度可达90%以上,且不含有HIV-1HBVHCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

兔腮腺细胞


培养步骤:

兔腮腺细胞
一、复苏细胞:将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻,加入5mL培养基混合均匀。在1000RPM条件下离心5分钟,弃去上清液,补加4-6mL培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液加入培养瓶中培养过夜(或将细胞悬液加入6cm皿中),培养过夜。第二天换液并检查细胞密度。

二、细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。

a)、对于贴壁细胞,传代可参考以下方法:

1. 弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。

2. 加1-2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培养瓶中,置于37℃培养箱中消化1-2min,然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加5ml以上含10%血清的培养基终止消化。

3.轻轻吹打细胞,脱落后吸出,在1000RPM条件下离心8-10分钟,弃去上清液,补加1-2mL培养液后吹匀。

4. 按5-6ml/瓶补加培养液,将细胞悬液按1:2的比例分到新的含5-6 ml培养液的新皿中或者瓶中。

b)、对于悬浮细胞,传代可参考以下方法:

方法一:收集细胞,1000RPM条件下离心8-10分钟,弃上清液,补加1-2ml培养液后吹匀,将细胞悬液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或瓶中。

方法二:可选择半数换液方式,弃半数培养基后,将剩余细胞悬起,将细胞悬液按1:2到1:3的比例分到新的含8ml培养基新皿中或者瓶中。

兔腮腺细胞

收到细胞如何处理?

兔腮腺细胞
1、首先,观察细胞培养瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象。若有,请拍照,并及时与技术支持联系(所拍照片将作为后续服务依据)。

2、用75%酒精擦拭细胞培养瓶表面,显微镜下观察细胞状态。因运输问题,部分贴壁细胞会有少量从瓶壁脱落;先不要打开培养瓶盖,将细胞置于细胞培养箱内静置培养2-4小时,以便稳定细胞状态。

3、仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如贴壁特性(贴壁/悬浮)、细胞形态、所用基础培养基、血清比例、所需细胞因子、传代比例、换液频率等。

4、静置完成后,取出细胞培养瓶,镜检、拍照,记录细胞状态(所拍照片将作为后续服务依据);建议细胞传代培养后,定期拍照、记录细胞生长状态。

5、贴壁细胞:若细胞生长密度超过80%,可正常传代;若未超过80%,移除细胞培养瓶内培养基,预留5ml左右继续培养,直至细胞密度达80%左右再进行传代操作,瓶盖可稍微拧松。

6、悬浮细胞:将细胞培养瓶内液体全部转移至50ml无菌离心管内,1200rpm离心5min,离心后上清培养基可收集备用,管底细胞沉淀加入5ml培养基吹打、重悬。镜检时,若细胞密度超过80%,可将细胞悬液分至2个细胞培养瓶内培养,补加培养基至5ml;若细胞密度未超过80%,将细胞悬液移至原瓶继续培养,直至细胞密度达80%左右时再进行传代操作

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